Institute細胞要要想在培養(yǎng)基中生長，便要創(chuàng)造細胞能夠生長的緩沖系統(tǒng)。細胞較脆弱一旦暴露在不適宜的環(huán)境中便會立馬死亡。

      在對培養(yǎng)基的環(huán)境進行調(diào)試的時候，要做成一套緩沖系統(tǒng)，能夠在方方面面照顧到細胞的成長，在細胞培養(yǎng)基中接入碳酸氫鈉讓其與空氣中的二氧化碳平衡，設(shè)置一定量的培養(yǎng)液，讓細胞正常的成長。并且在培養(yǎng)的過程中，不要把細胞培養(yǎng)基的蓋得太緊，以免造成氧氣的缺失，影響細胞的活性。

　　使用方法

　　Institute細胞是一種高度分化細胞，屬于不增殖細胞群，不能增殖和傳代，只能進行原代培養(yǎng)且存活時間較短。取出細胞培養(yǎng)瓶，用75%酒精消毒瓶身，拆下封口膜，放入37℃、5%CO2、飽和濕度的細胞培養(yǎng)箱中靜置3-4h，以穩(wěn)定細胞狀態(tài)。

　　吸出細胞培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基，添加0.25%胰蛋白酶消化液1mL至培養(yǎng)瓶中，輕微轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶至消化液覆蓋整個培養(yǎng)瓶底后，吸出多余胰蛋白酶消化液，37℃溫浴1-3min；倒置顯微鏡下觀察，待細胞回縮變圓后，再加入5ml*培養(yǎng)基終止消化。

　　用吸管輕輕吹打混勻、分散細胞，置于37℃、5%CO2、飽和濕度的細胞培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)；待細胞*貼壁后，培養(yǎng)觀察；之后每隔2-3天更換新鮮的*培養(yǎng)基。